Il corso si propone di fornire agli studenti le basi teoriche e le competenze pratiche riguardanti tecniche e strategie sperimentali utilizzate per esprimere e purificare proteine ricombinanti.
E' considerato obiettivo formativo anche l'acquisizione della capacità di registrare in modo sistematico dati e procedure e di valutare criticamente i risultati ottenuti in laboratorio.

1.  Tecniche elettroforetiche per l'analisi di proteine e Western Immunoblotting.

2.  Preparazione delle soluzioni per SDS-PAGE e allestimento di un gel.

3.  Metodi spettrofotometrici per il dosaggio delle proteine.

4.  Determinazione della retta di calibrazione della BSA con metodo Bradford.

5.  Scopi dell'espressione di proteine ricombinanti.

6.  L'espressione di proteine eterologhe in E. coli.

6.1.  Caratteristiche di un vettore di espressione.

6.2.  Strategie per prevenire la proteolisi in vivo.

6.3.  I corpi di inclusione: vantaggi, svantaggi, strategie per prevenirne la formazione (condizioni di fermentazione, ingegnerizzazione dell'ospite, ingegnerizzazione del prodotto).

7.  Metodi di purificazione di proteine ricombinanti prodotte in E. coli.

7.1.  Preparazione di un lisato batterico e tecniche di frazionamento iniziale.

7.2.  Recupero delle proteine dai corpi di inclusione e refolding in vitro.

7.3.  Sviluppo di un protocollo di purificazione: fasi, obiettivi, selezione e combinazione delle tecniche di frazionamento.

7.4.  La cromatografia di affinità applicata alla purificazione delle proteine di fusione.

8.  Crescita batterica, induzione della proteina ricombinante, raccolta dei batteri, estrazione delle proteine e determinazione del contenuto proteico.

9.  Analisi SDS-PAGE della frazione solubile ed insolubile dei lisati batterici.

10. Purificazione della proteina di fusione tramite cromatografia di affinità.

11.  Analisi SDS-PAGE/Western Immunoblotting delle frazioni cromatografiche.

12.  Calcolo della resa e del grado di purificazione.

Modalità didattiche

Lezioni frontali e in laboratorio.

Obblighi

Obbligo di frequenza delle lezioni per almeno 2/3 della loro durata.

Testi di studio

•B.R. Glick, J.J. Pasternak. Biotecnologia Molecolare, Principi e Applicazioni del DNA Ricombinante, Zanichelli.
•A.J. Ninfa, D.P. Ballou, Metodologie di Base per la Biochimica e la Biotecnologia, Zanichelli.
•K. Wilson, J. Walzer. Biochimica e biologia molecolare. Principi e tecniche, Raffaello Cortina Editore.
•R. K. Scopes, Protein purification, principles and practice, Springer-Verlag.

•articoli e riferimenti specifici aggiornati indicati dal docente durante il corso.

Modalità di
accertamento

Esame orale; quaderno di laboratorio (vedi note).

Disabilità e DSA

Le studentesse e gli studenti che hanno registrato la certificazione di disabilità o la certificazione di DSA presso l'Ufficio Inclusione e diritto allo studio, possono chiedere di utilizzare le mappe concettuali (per parole chiave) durante la prova di esame.

A tal fine, è necessario inviare le mappe, due settimane prima dell’appello di esame, alla o al docente del corso, che ne verificherà la coerenza con le indicazioni delle linee guida di ateneo e potrà chiederne la modifica.

Testi di studio

Stessi testi consigliati agli studenti frequentanti. Protocolli e dispense distribuiti dal docente durante le lezioni frontali e in laboratorio. Tale materiale é reperibile presso la segreteria del Corso di Laurea, sede di Fano.

Modalità di
accertamento

Prova pratica in laboratorio volta ad accertare le competenze nell'eseguire uno o parte dei protocolli effettuati durante le lezioni in laboratorio.

In caso di superamento della prova pratica, esame orale.

 

Disabilità e DSA

Le studentesse e gli studenti che hanno registrato la certificazione di disabilità o la certificazione di DSA presso l'Ufficio Inclusione e diritto allo studio, possono chiedere di utilizzare le mappe concettuali (per parole chiave) durante la prova di esame.

A tal fine, è necessario inviare le mappe, due settimane prima dell’appello di esame, alla o al docente del corso, che ne verificherà la coerenza con le indicazioni delle linee guida di ateneo e potrà chiederne la modifica.

Gli studenti dovranno compilare individualmente un quaderno di laboratorio. Il quaderno rimane in laboratorio per tutta la durata del corso ed è riconsegnato allo studente prima dell'esame. Il quaderno è oggetto di discussione durante l'esame orale e la sua corretta compilazione, valutata dal docente, concorre assieme alla prova orale a determinare il voto finale.